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DNA fingerprinting

Synopsis-
1. Introduction
2. Definition
3. Your genetic map
4. DNA fingerprinting test
5. Use of DNA fingerprinting
6. Reference

Introduction
डीएनए फिंगरप्रिंटिंग एक रासायनिक परीक्षण है जो किसी व्यक्ति या अन्य जीवित चीजों के आनुवंशिक मेकअप को दर्शाता है। इसका उपयोग अदालतों में साक्ष्य के रूप में, शवों की पहचान करने, रक्त संबंधियों का पता लगाने और बीमारी के इलाज की तलाश के लिए किया जाता है।
Definition
"रक्त, लार या बालों जैसे शारीरिक नमूनों का उपयोग करके व्यक्तियों की पहचान करने के लिए एक प्रयोगशाला आनुवंशिक तकनीक या विधि को डीएनए फिंगरप्रिंटिंग कहा जाता है।"
"दो व्यक्तियों या जीवित जीवों के बीच उनके एसटीआर और वीएनटीआर का विश्लेषण करके एक लिंक या संबंध स्थापित करने के लिए नियोजित डीएनए परीक्षण को डीएनए फिंगरप्रिंटिंग के रूप में जाना जाता है।"
Your genetic map
डीऑक्सीराइबोन्यूक्लिक एसिड के लिए डीएनए छोटा है, जो आपके शरीर की हर कोशिका के अंदर होता है। यह रासायनिक यौगिकों की एक श्रृंखला है जो जीवन के लिए स्थायी ब्लूप्रिंट बनाने के लिए एक साथ जुड़ती है।
इन यौगिकों को आधार कहा जाता है, और उनमें से 4 हैं। वे एक दूसरे के साथ जुड़कर आधार जोड़े कहलाते हैं। आपके डीएनए में इनमें से लगभग 3 बिलियन जोड़े हैं। जिस तरह से वे एक साथ बंधे हैं, वह आपकी कोशिकाओं को बताता है कि एक दूसरे की प्रतियां कैसे बनाई जाती हैं।
आपके यौगिकों का पूरा सेट जीनोम के रूप में जाना जाता है। 99.9% से अधिक सभी के जीनोम बिल्कुल एक जैसे हैं (100% यदि आप समान जुड़वां हैं)। लेकिन वह छोटी सी बात जो आपको शारीरिक और मानसिक रूप से किसी और से अलग बनाती है, वह नहीं है।
डीएनए फ़िंगरप्रिंटिंग डीएनए के स्ट्रैंड को अलग करने और आपके जीनोम के अनूठे हिस्सों को प्रकट करने के लिए रसायनों का उपयोग करता है। परिणाम धारियों के एक पैटर्न के रूप में दिखाई देते हैं जिनका मिलान अन्य नमूनों से किया जा सकता है।
DNA fingerprinting test
अपना डीएनए फ़िंगरप्रिंट प्राप्त करने के लिए, आप अपने शरीर से कोशिकाओं का एक नमूना देंगे। यह आपके मुंह के अंदर , आपकी त्वचा से, आपके बालों की जड़ों से , या आपकी लार , पसीने या शरीर के अन्य तरल पदार्थों से आ सकता है। रक्त आमतौर पर सबसे आसान तरीका है। लैब कर्मचारी डीएनए को अलग करने के लिए रसायनों के साथ नमूने का इलाज करते हैं, जिसे बाद में पानी में घोल दिया जाता है।
आपके डीएनए को 5 से 10 आधार जोड़े के खंड प्राप्त करने के लिए एक और रासायनिक प्रक्रिया के साथ छोटे खंडों में काट दिया जाता है जो खुद को दोहराते हैं। आसान अध्ययन के लिए नमूनों को लंबा बनाने के लिए तकनीशियन उन छोटे वर्गों को लाखों बार कॉपी करते हैं।
लैब कर्मचारी डीएनए की उन स्ट्रिप्स को लेते हैं और उन्हें एक जेल में मिलाते हैं। फिर वे जेल के माध्यम से एक विद्युत प्रवाह चलाते हैं, जो डीएनए के छोटे तारों को बड़े से अलग करता है। जेल में डाली जाने वाली डाई डीएनए स्ट्रिप्स को तब बाहर खड़ा करती है जब उन्हें पराबैंगनी प्रकाश के खिलाफ रखा जाता है या लेजर से जलाया जाता है।
इन छोटे खंडों का जितना अधिक परीक्षण किया जाएगा, डीएनए प्रोफाइल उतना ही सटीक होगा। स्ट्रिप्स एक बारकोड जैसा पैटर्न दिखाएगा जिसकी तुलना डीएनए के दूसरे नमूने के परिणामों से की जा सकती है ताकि एक मैच मिल सके।
Use of DNA fingerprinting
1984 में इसका आविष्कार होने के बाद से, डीएनए फ़िंगरप्रिंटिंग का उपयोग अक्सर अदालती मामलों और कानूनी मामलों में किया जाता है। 
शारीरिक रूप से सबूत के एक टुकड़े को किसी व्यक्ति से कनेक्ट करें या किसी को संदिग्ध के रूप में खारिज करें।
दिखाएँ कि आपके माता-पिता, भाई-बहन और अन्य रिश्तेदार कौन हो सकते हैं।
एक मृत शरीर की पहचान करें जो पहचानने योग्य होने के लिए बहुत पुराना या क्षतिग्रस्त है।
डीएनए फिंगरप्रिंटिंग बेहद सटीक है। अधिकांश देश अब डीएनए रिकॉर्ड को फाइल पर उसी तरह रखते हैं जैसे पुलिस वास्तविक उंगलियों के निशान की प्रतियां रखती है।
Conclusion-
वैज्ञानिक लंबे समय से कई अलग-अलग अनुप्रयोगों के लिए डीएनए फिंगरप्रिंटिंग का उपयोग कर रहे हैं। हालांकि, यह अपराध स्थल की जांच और माता-पिता की पहचान के दावों को निपटाने में अधिक लोकप्रिय हो गया है। 
तकनीक सटीक, विश्वसनीय, तेज और सस्ती है, हालांकि परिवर्तन समय पर हो सकते हैं। परंपरागत रूप से, शोधकर्ताओं ने प्रतिबंध पाचन पर भरोसा किया है, लेकिन पीसीआर ने इसे और अधिक आक्रामक बना दिया है।
Reference-
1. Mader, Sylvia (2007). Biology Ninth Edition. 
2. "Gene mapping - Glossary Entry". National Library of Medicine. 2013-

DNA chips technology and microarrays

DNA chips techlnology and microarray

1. DNA chip सिलिकॉन काच की पतली पट्टियां होती है जिन पर अनेकों अल्पन्यूक्लियोटाइड संश्लेषित तथा अबद्ध होते हैं। Oligonucliotide की संख्या 300000 से 1000000 से भी अधिक प्रति वर्ग सेंटीमीटर  होती है।
2. Oligonucliotide का संश्लेषण सीधे सिलिकॉन पट्टी पर पूर्ण निर्धारित स्थलों पर की जाती है प्रत्येक Oligonucliotide का क्षारक  sequence एक भिन्न जीन का क्षारक क्रम होता है।
3. अतः जिन जिनो के लिए डीएनए chip बनना है । उनका चारा कम ज्ञात होना चाहिए।
4. Oligonucliotide synthesis के लिए दो तकनीकों  , photolithography एवं ठोस अवस्था DNA synthesis का उपयोग किया जाता है।
5. DNA chip को नियमित तापमान वाले संकरण chamber के ऊपर इस प्रकार रखते हैं जिससे कि chip के oligonucliotide संकरण chamber मे रखे गए cDNA के मिश्रण में डूब जाए।
6. यह cDNA preparation fluoresence चिन्नहक युक्त होता है। oligonucliotide का cDNA के साथ पूरक युग्मन होने दिया जाता है।
7. Hybridizetion के परिणाम ज्ञात करने के लिए लेसर किरणों से उत्तेजन किया जाता हैं। और flurocense detection किया जाता हैं।
8. Fluorocense के आधार पर Hybridizetion करने वाले oligonucliotide(= जीनों ) की पहचान कर ली जाती हैं, और संकरण की तीव्रता भी ज्ञात कर सकते है, DNA chip microarray के उपयोगी विकल्प है।
Applications of microarray and DNA chip -   1. इनके उपयोग से किसी जीव में जीनो की अभिव्यक्ति के पैटर्न पर development की अवस्था, उत्तक का प्रकार वातावरण की दशाओं आदि का प्रभाव ज्ञात करते हैं। सबसे पहले microarray का उपयोग खमीर ( yeast ) मे किया गया था। Yeast के जीनोमा में उपस्थित 6,000 जीने में से प्रत्येक को क्लोन करके उसकी प्रतियो को एक कांच की स्लाइड पर 80 × 80 बिंदुओ के क्रम में निशचालित ( immobilize ) किया गया। इस microarray का उपयोग विभिन्न दशाओं में yeast में अभिव्यक्त हो रहे जीनो को पहचानने के लिए किया जाता है। उदाहरण के लिए yeast की कुछ कोशिकाओं के स्पष्ट दशाओं ( वातावरण 1 ) में तथा कुछ अन्य की लवण प्रतिबल Salt stress ( वातावरण 2 ) की दशा में कल्चर करते है। इन दोनो culture से MRNA विलमित करके उससे cDNA का संश्लेषण करते है। ये cDNA प्रदिप्तिशील अणुओ से चीनहित किए जाते है। इन दोनो cDNA preparation का उपरोक्त microarrays से संकरण करने देते है। और संकरण करने वाले जीनो को काले रंग के रूप मे दर्शाया गया है। दोनो cultures मे अभिव्यक्त होने वाले जीनो की तुलना करने पर लवण प्रतिबल ( salt stress) की response मे अभिव्यक्त होने वाले जीनो की पहचान की जा सकती है। 
2. एक साथ नियमित ( caregulated ) जीनो के सर्वनिष्ट ( comman ) नियामक अवयवों ( regulatory elements ) की पहचान की जा सकती है।
3. DNA chips को SNPs ( single nucleotide polymorphism) के संसूचन     (detection )  एवं उनके विश्लेषण के लिए कर सकते है। इन chips को SNP Chip कहते है।
4. DNA Chips के उपयोग से आनुवनशिक रोगो का निदान ( diagnosis ) किया जा सकता है। कुछ रोगो , जैसे सिस्टिक , fibrosis , जीन BRCI के उत्परिवर्ती एलिलो के कारण उत्पन्न स्तन कैंसर आदि के निदान के लिए DNA chips का उपयोग हों रहा है।

Advantages of microarray / DNA chips - 
1. इनके उपयोग से परीक्षणों के परिणाम बहुत शीघ्र प्राप्त होते हैं। और ये परीक्षण अत्यन्त संवेदनशील होते हैं।
2. जीव के जिनोम में उपस्थित जीनों का एक साथ अध्ययन किया जा सकता है।
3. इनके उपयोग से अभिव्यक्त होने वाले जिनो की अभिव्यक्ति का स्तर भी ज्ञात किया जा सकता है।
4. विभिन्न cDNA किरणों को अलग-अलग प्रदिप्तिशील अणुओं  को चिन्हित करने पर उनका एक ही  microarray  DNA chips के उपयोग से एक साथ अध्ययन किया जा सकता है।

concept of cellular differentiation and totipotency

concept of cellular differentiation and totipotency

Synopsis - 
1. Introduction
2.Definition
3. History
4. Experiment
5. Factors affecting
6. Applications
1. Introduction -   सभी multicellular जीव , जिनमे उच्च पौधे और जानवर शामिल हैं, ये single cell zygote से बनते है मतलब की mitotic division और differentiation होता है और फिर multicellular जीव बन जाता है।
            Animal cell में ज्यादातर cell होते हैं जो एक बार differenctiation हो जाते हैं तो दुबारा से meristemetic नही बन पाते, जबकि living plants में power होती है कि वह differentiate हो जाते है। व meristemetic cell में convert  हो जाते है।
              इन्हे जब favorable conditions मिलती हैं, तो वह एक नया plant बना लेते हैं।  Plants में ये जो power है या potential होती है जिससे वह differentiate होकर नया plant बना लेते है इसे cellular differentiation या totipotency कहते हैं।
यह क्रिया plant tissue culture मे होती हैं जिसमे plant के leaf ,stem या roots आदि को लेकर aseptic condition में रखते हैं तथा नई division बना लेते हैं।
           Plant tissue culture ki basis of unit totipotency है।

2. Definition - "Totipotency is the genetic potential of a plant cell to produce the entire plant "
Explanation -  Tissue culture की basis यह होती है कि हमे sterile conditions में plant की cells को grow करवाना होता है।
    यह cells plant के root , stem ,leaf etc se लिए जाते हैं तथा culture medium मे cells को growth करवाने के लिए mineral, nutritients, vitamins and hormones दिए जाते है जिससे cell division और growth होती है। इसका result यह होता है कि tissue culture मे उपस्थित cell एक unorganised proliferative mass मे परिवर्तित हो जाता है, जिसको हम callus कहते हैं। जिन cell में cell एक से दूसरी cell में differentiated हो जाती हैं वह meristematic cell बनाती हैं और बाद में callus बनता है। 
डिफरेंटिएट cell दुबारा से mature cell या meristematic state मे चले जाते है इसे हम de-defferentiation कहते है।
Callus याmeristematic cell में plant का regeneration हो जान re-defferentiation
कहलाता है।
अगर defferentiation में एक organ दूसरे organ मे directly referred हो जाता है उसे trans-defferentiation कहते हैं।

3. History - सर्वप्रथम यह शब्द P.H. Morgan (1901) ने बताया । लेकिन बाद में एक German plant physiologist था Gotlib haberlandt  इसने German academy में 1902 में cellular totipotency से  introduce करवाया था।
इन्होंने बताया जो terminally differentiate plant cells होते है जिसमे अगर chromosomes होंगे तो वो पूरे plant को regenerate कर सकते हैं। इन्होंने यह बताया था कि single cells को अगर हम differentiated tissue से isolate करते हैं और इसको nutrien medium मे कल्चर करते हैं तो फिर हमे प्लांट मील सकता है।
                                            इनको अपने experiment मे पूरी तरह कामयाबी नहीं मिली थी क्योंकि उस समय कुछ limitations थी लेकिन उन्होंने एक सुझाव दे दिया था। जिससे बाकी scientist ने बाद में study किया।

4. Experiments - Steward Experiments,Steward ने experiment किया था Carrot पर उन्होन carrot के Floem tissue का 2mg Slices लिया था तथा एक liquid nutrient media (Coconut water) लिया।
        जो plant cell का part होता है। जिसे culture में रखते है। उसे उन्होन explant कहा ( Ex– phloem tissue of carrot go at )
        Liquid nutrient media को कुछ समय तक रख दिया। 
         बाद मे देखा कि culture मे रखे explant Continuously divide होकर undifferentialed tissue बन जाता है। जिसे Callus कहते है।
           अब यह Clusters या undifferentialed tissue है। वह root बनाना प्रारम्भ करते है।
          जब इसे semi solid medium मे transfer किया तो इसमें Shoot System भी Devlop होने लगते है। तथा नया plant बनने लगा।
          अब इस छोटे plant को pot / soil में transfer करते है। ताकि एक पूरा plant बन जाए 
           Steward से experent में कहा जाता था। Plant के mature cell भी होते है, जो dedeferentiate कर सकते है। तथा  redifferentiate करके फिर से नया plant बना सकते है।
           Plant tissue root, stem, lean, vegetative bud, floral bud, anther and embryo इनमे totipotency होती है तथा tissue ले सकते है।
 

ORGENOGENES IN PLANTS

ORGENOGENES IN PLANTS

Synopsis :-
  1.  Introduction
  2. Steps of organogenesis
  3. Some important terms of organogenesis
  4. Role of growth regulators
  5. During organogenesis
  6. Plant production through organogenesis
  7. Factors affecting organogenesis
1. Introduction :-
  • Organogenesis  का सीधा अर्थ है organs का formation या development.
  • plant tissue culture के अंदर plant को regenerate  करवाने का सबसे बेहतर तरीका है organogenesis
  • Organogenesis process plants के organs जैसे - roots shoots and flowers को या तो directly explant से,      या callus culture में organs के development को defined करता है।

2. Steps of organogenesis :-  The process of organogenesis involves   two steps -
(1) Dedifferentiation
(2) Redifferentiation
  • Dedifferentiation process मे जो explant होता है उससे callus बनता हैं।
  • जबकि Redifferentiation process मे callus से premordia बनता है।Premordia एक organ के बनने की शुरुवाती step होती है इसके बाद shoot etc बनते हैं।

3. Some important terms of organogenesis - 
  • Meristmoid- callus से जो meristematic cells बनते है वो Meristmoids कहलाते है। ये आगे चलकर shoots or roots मे convert होते है।
  • Caulogenesis - callus से जो shoot or  bud का initiation होता है उसे coulogenesis कहते हैं।
  • Rhizogenesis - Adventitious root के formation को rhizogenesis कहते है।
  • Organoids - कुछ tissue culture में organogenesis programming मे कुछ error होता है तब एक विषम संरचना का निर्माण होता है जिसे organoids कहते हैं।

4.Role of growth regulators :-
  • अगर हमे root की formation करवानी होती है तो auxin की concentration ज्यादा होनी चाहिए तथा cytokinin  की कम होनी चाहिए।
  • अगर shoot की formation तब Auxin की  concentration कम होनी चाहिए तथा cytokinin की ज्यादा होनी चाहिए।
  • अगर callus को maintain करना है तो cocentration same होनी चाहिए।
 5. During organogenesis :- 
  • यदि root का formation पहले हो जाता  है, उसी callus से shoot bud बनना बहुत     मुश्किल होता है।
  • लेकिन अगर shoot bud पहले बनती है तो बाद मे जड़े बना सकते है। जड़ हीन की स्थिति     में तब तक रह सकते है जब तक कि किसी अन्य मीडिया या hormone रहित medium  मे स्थानांतरित न हो जाए जो root  formation को प्रेरित करते हैं
  • कुछ cases में root और shoot dono का     निर्माण एक साथ हो सकता है।

6. Plant production through organogenesis :- organogenesis के माध्यम से पौधो का उत्पादन 2 तरीकों से प्राप्त किया जा सकता है – 
  1. Direct organogenesis
  2. Indirect organogenesis

              Direct organogenesis
  1. इसमें planletes explant के द्वारा directly बनते है। इसमें कोई Callus formation नही होता है।
  2. Plant की सभी cells original sygote से mitotoc division द्वारा बनती है, जिसमे Complete genome होता है।
  3. इसमें जो adventitious buds बनती हैं, वे उस genome मे उपस्थित genes के reactivation पर depend करती है।
  4. इस medium मे growth regulators Auxin or cutonin डालने पर different प्रकार के tessue explant से shoot formation start होता है।

         Indirect organogenesis
इसमें पहले callus formation होता है और बाद मे shoot तथा फिर root  formation होता है। तो वह Indirect organogenesis कहलाता है।

7.Factors affecting organogenesis :-
(1) Size of explant
(2) Source of explant
(3) Age of explant
(4) Seasonal variation
(5) Oxygen gradient
(6) Quality and intensity of light
(7) Temperature
(8) Plant hormones
(9) culture medium
(10) Agar - Agar
(11) pH of the medium
(12) Age of culture

Transcryptome

             TRANSCRYPTOME
किसी कोशिका का genome संपूर्ण gene का का संग्रह कहलाता हैं। जबकि कोशिका में निश्चित समय पर जिनका एक सेट ही सक्रिय होता है कुछ जीन 'Housekeeping' (हाउसकीपिंग)कार्य दिखाते हैं जबकि अन्य जीव कोशिका के प्रकार और वातावरण के अनुरूप नियंत्रित होते हैं , सक्रिय जीन से उत्पन्न होने वाले transkrypt के समूह TRANSCRYPTOME कहलाते हैं। एवं इसका उपयोग जीन expression के investigation मे होता है। जिसके लिए DNA microarray technology का उपयोग करते हैं।
                       Micro array technology द्वारा विभिन्न प्रकार के ट्रांसकृप्तो का एनालिसिस किया जाता है। इसका उपयोग दो अलग-अलग सेल द्वारा उत्पन्न ट्रांसक्रिप्ट के पैटर्न का निरीक्षण करने के लिए होता है जिसमें कोशिकाओं को अलग-अलग परिस्थिति में ग्रो करवाते हैं माइक्रो एरो कंप्लीमेंट्री डीएनए (cDNA) अथवा ओलिगोन्यूक्लियोटाइड से बना होता है और दोनों प्रकार की कोशिकाओं से उत्पन्न ट्रांसक्रिप्ट से जुड़ने के पैटर्न को बताता है इस प्रकार से एक सिंपल में जिनके सिक्वेंस को पता लगा पाना संभव होता है लेकिन दूसरे में नहीं हो पाता।
                       Transcript analysis करने का एक अन्य विधि का सामान्य और disease अवस्था की कोशिकाओं द्वारा होती है। इस विधि में इस विधि में micro array अवस्था DNA cheap KO sample से प्राप्त m rna के साथ तुलना करते हैं जिसमे सामान्य एवम् disease दोनो कोशिकाएं होती हैं । प्रत्येक कोशिका से प्राप्त  m rna का उपयोग fluaorocent tagged cDNA को उत्पन्न करने में किया जाता हैं। जिसमें सामान्य एवं disease कोशिकाएं अलग-अलग colour dye से tagged होती है sample को mix कर micro array के साथ incubet करते हैं । जिससे complementry DNA (cDNA) उसके समान sequence से जुड़ जाता है और इस प्रकार के pattern का उपयोग सामान्य एवम disease cells द्वारा gene expression को identify करने में होता है।
         Transkryptomine मुख्य रूप से transcrypt के मुख्य समूह को कहते है लेकिन कभी कभी इसे expresssome कहते है क्योंकि इससे उत्पन्न सम्पूर्ण complement gene expression दिखाते हैं।


practical 1 MSc botany 4 th sem

plant tissue culture

Synopsis :-
1. Introduction or definition
2. History
3. Necessity of plant tissue culture
4. Types of plant tissue culture
5. Applications of plant tissue culture
6. Importance of plant tissue culture

1.Introduction or definition :-" पादप उत्तक संवर्धन ज्ञात संगठन के पोषक संवर्धन माध्यम पर अजर्म  परिस्थितियों में पादप कोशिकाओं , उत्तकों या अंगो को  बनाए रखने या विकसित करने के लिए उपयोग की जाने वाली तकनीकों का एक संग्रह है। यह व्यापक रूप से एक पौधे के क्लोन (clones) का उत्पादन करने के लिए उपयोग किया जाता है जिसे माइक्रोप्रोपेगेशन (micropropagation) के नाम से जाना जाता है।"

2. History :- उत्तक संवर्धन का आरंभ सन 1902 में हुआ जब हैबरलैंड ( Haberlandt ) ने सुझाव दिया कि पादप की एक कोशिका को प्रथक करके उगाया जा सकता है।  हेबरलैंड के इस प्रयोग का उद्देश्य पादप कायिका कोशिकाओं की पूर्णशक्तता ( totipotency ) सिद्ध करना था। लेकिन वह इसको प्रायोगिक रूप से सिद्ध न कर सके।
             रोबिंस एवं कोटे ( Robbins & Kotte, 1922 ) ने मुलो की पृथक कोशिकाओं को ऊगाकर आंशिक सफलता प्राप्त की। गोथेरेट ( gautheret ) नोबकोर्ट एवं हाइट ( Nobecourt & White 1909 ) ने गाजर तथा तंबाकू के कैंबियल उत्तक से उत्तक संवर्धन प्राप्त करने में सफलता प्राप्त की। इसके पश्चात अनेक वैज्ञानिक ने उन्नत तकनीकियो द्वारा कोशिका, उत्तक तथा अंगों के संवर्धन प्राप्त करने के लिए विभिन्न प्रकार के माध्यम ( medium ) का प्रयोग किया।
                 प्रसिद्ध वैज्ञानिक स्टीवर्ड एवं उसके साथियों ( Steward. al. 1956 ) ने गाजर के संवर्धन पर महत्वपूर्ण कार्य किए। उन्होंने अपने प्रयोग से गाजर ( carrot ) के जड़ की फ्लोएम कोशिकाओं के 2 - 2 मी. ग्राम टुकड़ों ( explant ) को नारियल पानी मुक्त द्रव माध्यम पर रखा। इन कोशिकाओं में विभाजन के फलस्वरुप कैलस (callus) का निर्माण हुआ। कुछ समय बाद स्टीवर्ट ने माध्यम में तैरते हुए उत्तको को देखा जिसको उन्होंने भ्रुणाभ ( embryoid)  कहा।

     जब इनको पोषक संवर्धन मध्यम पर उगाया गया तो ये सामान्य पूर्ण पौधे के रूप में विकसित हो गए। वर्तमान में वैज्ञानिकों ने यह सिद्ध कर दिया है, कि पौधे की प्रत्येक वर्धी ( Somatic ) कोशिका में एक नया पौधा विकसित करने की क्षमता होती है। अर्थात पौधे की प्रत्येक वर्धी अथवा कायिका कोशिका पूर्णशक्त अथवा टोटीपोटेंट होती है।

3. Necessities of plant tissue culture : - संवर्धन प्रयोगों में पौधों से पृथक किए गए उत्तक को पोषक माध्यम ( Nutrient medium ) पर उगाया जाता है। यह विधि पात्रे ( in vitro ) तकनीक कहलाती है। इसके लिए निम्न तीन मुख्य पहलू है जिनक होना आवश्यक है –
1. ( पोषक माध्यम ) Nutrient medium : - पौधे के प्रत्येक भाग तथा उत्तक की वृद्धि के लिए उसकी अपनी एक खास आवश्यकता होती है।  जिससे कि उसमें पूर्ण वृद्धि होती है। अधिकांश माध्यम ( medium ) में दीर्घ तथा सुक्षम तत्वों के अकार्बनिक लवण, विभिन्न शर्कराए होती है। माध्यम को ठोस करने के लिए 2% ( प्रतिशत )  एगार - एगार ( Agar - Agar )  भी मिलाते हैं।
              विभिन्न वैज्ञानिकों ने पादपो के उत्तक संवर्धन के लिए विभिन्न प्रकार के माध्यम को तैयार किया है। जिन्हें हम आज प्रयोग में लाते हैं। इन पोषक मध्यम को तैयार करने के लिए विभिन्न प्रकार के कार्बनिक तथा अकार्बनिक पदार्थों को मिलाया जाता है। इसके अतिरिक्त विटामिंस शर्कराएं तथा कुछ वृद्धि नियामक ( Growth regulators ) जैसे -  ऑक्सिंस ( Auxins ), साइटोंकाईनिन्स ( Cytokinins ) आदि को मिलाकर मध्यम तैयार किये जाते हैं। इसके अतिरिक्त पोषक माध्यम में विभिन्न प्रकार के पादप सत्व ( extracts ), जैसे फलों के रस में उपस्थित केसीन हाइड्रोलाइसेट ( Casein hydrolysate ) तथा यिस्ट सत्व  ( yeast extract ) भी मिला दिए जाते हैं। इसके फलस्वरूप माध्यम में उत्तक कच्चर शीघ्रतापूर्वक होता है।
          जिस प्रकार का माध्यम बनाना होता है उसके रासायनिक पदार्थों के अलग-अलग तोल लिया जाता है, और निश्चित पानी की मात्रा में उन्हें घोल दिया जाता है। द्रव माध्यम ( liquid medium ) बनाने के लिए उसमें  Agar – Agar नहीं मिलाया जाता है किंतु आर्ध ठोस माध्यम ( Semi – Solid medium ) बनाने के लिए इसमें 0.8 प्रतिशत एगार का पाउडर मिलाते हैं, इस बात का विशिष्ट ध्यान रखा जाता है कि बने हुए माध्यम का पी-एच ( PH ) मान 5.8 होना चाहिए। इसके पश्चात माध्यम को पाइरेक्स ( purex )  के बने हुए फ्लास्को संवर्धन नलीयों  ( culture tubes ), पेट्रीडिश ( Petridish ) में भरकर कॉटन का प्लग ( cotton plug ) लगा दिया जाता है। इस प्रकार बर्तनों में भरे हुए संवर्धन माध्यम में विभिन्न प्रकार के संवर्धन किए जाते हैं।

2. अजर्म अवस्था ( Aseptic condition ) : - संवर्धन प्रयोग की सफलता अजर्म अवस्था पर निर्भर करती है, क्योंकि संवर्धन माध्यम के अंदर शर्करा होती है जिससे उसमें सूक्ष्मजीवों की तेजी से वृद्धि करने की संभावना रहती है जो संवर्धन किए गए उत्तक को पूरी तरह से ढक देते हैं तथा उसकी वृद्धि को रोकने का प्रयास करते हैं। कॉच का सामान जैसे – संवर्धन नलिका ( culture tube ), पेट्रीडिश, फ्लास्क, बीकर आदि को ऑटोक्लेव ( Autoclave ) या ओवन ( oven ) मे रखकर निजिक्रत करते हैं। वातावरण को निजिक्रत करने के लिए फॉर्मेलिन या UV किरणों का प्रयोग किया जाता है।
          पादप मटेरियल की सतह पर किसी भी मटेरियल को पादप मटेरियल को प्रकार के सूक्ष्म जीवों में रहे अतः इसकी सतह का निर्जलीकरण संरोपण (inoculation) से पूर्व निम्न प्रकार संरोपण कक्ष में करते हैं।
(1) सर्वप्रथम पादप material को 5% v/v टीपाल(teepal) के बोल मे 10-15 minutes' डूबा रहने दीजिए।
(2) पादप material को चिमटी की सहायता से निकालकर अच्छी तरह पहले पानी से नल के नीचे धोइए और फिर आसुत जल में धोइए।
(3) इसके बाद पादप material को संरोपण कक्ष मे 70% इथाइल एल्कोहल में डुबाकर एक मिनट तक रखा रहने दीजिए।
(4) तत्पश्चात पादप मटेरियल को ऑटोक्लेव जॉ बोतल (autoclave jaw bottle) 0-1% मार्क्यूरिक क्लोराइड (Hgcl 2) तथा 5-10% sodium hydrochloride के समान आयन (v/v) लेकर 10-15min. तक डूबा रहने दीजिए।
(5) इस घोल में डूबे पादप material को भली भांति हिलाइए ताकि 100% निर्जलीकरण हो जाए।
(6) अब पादप material को एक बीकर में डालकर निर्जलीकृत जल में भली भांति धोइए ताकि Hgcl 2 का प्रभाव समाप्त हो जाए।

3. वातन (aeration) :- प्रयोगशाला में जिन उत्तको को संवर्धित किया जाता है उन्हें उपयुक्त वायु प्राप्त होनी चाहिए। जब उत्तको का संवर्धन द्रव माध्यम में किया जाता है तो वायु का प्रबंध विशिष्ट रूप से किया जाता है। इस विधि के लिए फिल्टर पेपर ब्रिज ( filter paper brite)अथवा फिल्टर स्टेरलाइज वायु प्रवाहित की जाती है। इसके अतिरिक्त माध्यम में वायु प्रवाहित करने के लिए स्वचालित शेकर ( shaker Automatic shaker )  का प्रयोग भी किया जाता है। Shaker द्वारा उपचारित करने से उत्तक एकल कोशिकाओं में विभक्त हो जाते है और यह क्रिया ( cloning ) क्लोनिंग कहलाती है जो आनुवंशिकता में महत्वपूर्ण होती है।

 4. पादप ऊतक संवर्धन के प्रकार (Types of plant tissue culture)
    पादप उत्तक संवर्धन को निम्न पांच वर्गों में विभक्त किया गया है –

  1. केलस संवर्धन ( callus culture ) – इस विधि में अजर्म, कोशिका समूह का एक माध्यम पर संवर्धन किया जाता है। पादप मेटीरियल किसी पादप स्त्रोत से प्राप्त करते हैं।
  2. कोशिका संवर्धन ( Cell culture ) – इस विधि में मेटेरियल कैलस से प्राप्त करते हैं और अजर्म कोशिकाओं का संवर्धन, तरल माध्यम पर किया जाता है।
  3. विभज्योतक संवर्धन ( Meristem culture ) – इस विधि में संपूर्ण पादप को प्राप्त करने के लिए प्ररोह प्रविभाजी ( Shoot meristem ) का अजर्म, संवर्धन पोषक माध्यम पर किया जाता है।
  4. ऑर्गन संवर्धन ( Organ culture ) – इस विधि में भ्रूणों, पराग कोष, अण्डाशयो तथा अन्य पादप अंगो का अजर्म संवर्धन पोषक माध्यम पर किया जाता है।
  5. प्रोटोप्लास्ट संवर्धन ( Protoplast culture ) – इस विधि में संवर्धित कोशिकाओं ( cultured cells ) या उत्तको को पादप जीवद्रव्य का अजर्म प्रथक्किकरण ( Isolation ) एवं संवर्धन किया जाता है।

( 1.)  कैलस संवर्धन ( Callus culture )– पादप के वे भाग या उत्तक जिनसे संवर्धन की प्रक्रिया प्रारंभ की जाती है कर्तोतक या एक्सप्लानट ( Explant ) कहा जाता है। Explant को उपयुक्त संवर्धन माध्यम में रखने पर इसमें कोशिका विभाजन होता है जिसके परिणामस्वरूप असंख्य कोशिकाओं के एक अभिवेदन एवं असंगठित समूह का निर्माण होता है, जिसे कैलस ( Callus ) कहते हैं। इस कैलस में असामान्य वृद्धि होती है तथा इसमें पौधे की अन्य महत्वपूर्ण संरचनाएं उत्पन्न हो जाती है। इन सरचनाओं से कुछ समय बाद  पादपक (Plantlost) उत्पन्न हो जाते हैं। कैलस का यह गुण उसकी प्रमुख कार्यिकीय विशेषता होती है।

( 2.) कोशिका संवर्धन ( Cell culture ) – एकल कोशिक संवर्धन ( Culture of single cells ) –
                सन 1953 में मुईर ( muir ) ने  निकोटियाना टेबेकस (Nicotiona tabacum) तथा टेजिटीस इरेक्टा ( Tagetes erecta ) पादपो की कोशिकाओं का कोशिका निलंबन विधि ( Cell Suspension method ) द्वारा संवर्धन करके सफलता प्राप्त की है। इसके अतिरिक्त अन्य वैज्ञानिकों ने गाजर की जड़ तथा एंटीराइनाम मेंजस  ( Antirahinum majus)आदि पौधों की कोशिकाओं का निलंबन संवर्धन ( Surpension culture किया है। एकल कोशिकाओं के संवर्धन के लिए निम्नलिखित विधियां प्रयोग में लाई जाती है–
(i)  पेपर रेफ्ट नर्स तकनीक ( Paper raft nurse technique ) – इसमें कैलस को पानी में हिलाकर कोशिकाओं का निलंबन बना लिया जाता है और किस सूई की सहायता से निलंबन में से एकल कोशिकाओं को पृथक कर लेते हैं। इसके पश्चात कैलस पर रखे गए फिल्टर पेपर के ऊपर एकल कोशिका को स्थानांतरित कर दिया जाता है। संवर्धन माध्यम पर रखे हुए नर्स कैलस ( nurse cells ) को पोषण मिलता रहता है, जो फिल्टर पेपर से प्राप्त होता है और एकल कोशिका संवर्धन करके विभाजन प्रदर्शित करती है। इसके पश्चात एकल कोशिका में मंडल          ( colony )  बन जाते हैं, जो एकल कोशिका क्लोन ( Single cell clone ) कहलाते हैं। उदाहरण – क्राउन गाल कोशिकाएं ( crown gall cells )।
(ii) पेट्रीडिश प्लेटिंग तकनीक ( petridish plating technique ) – इसमें पानी में बने हुए कैलस के निलंबन में कोशिकाओं को पृथक कर लेते हैं। इसके पश्चात निलंबन को छानकर कैलस आदि के टुकड़ों को पृथक कर दिया जाता है। और छने हुए द्रव में अनेक एकल कोशिकाएं तथा एकल कोशिकाओं के समूह आ जाते हैं। एगार - एगार ( Agar - Agar ) पोषक माध्यम बनाकर इन एकल कोशिकाओं के निलंबन को उसमें मिला दिया जाता है और इसके बाद एकल कोशिकाओं सहित पोषक माध्यम को स्टेरिलाइज़ड ( Sterilized ) करके पेट्रीडिश में उड़ेल दिया जाता है। उसके पश्चात पेट्रीप्लेटो को 25° c पर रख दिया जाता है और 3 - 4 दिन के बाद एकल कोशिकाओं से उत्पन्न क्लोनस ( Clons ) का निरीक्षण सूक्ष्मदर्शी द्वारा किया जाता है। जब क्लॉन्स बन जाते हैं तो उन्हें पेट्रीडिश से निकालकर दूसरे माध्यम में स्थानांतरित कर दिया जाता है।
(iii) माइक्रो चैम्बर तकनीक ( Micro chamber technique ) – सन 1960 में प्रसिद्ध वैज्ञानिक  हैबरलैंड ( Haberland ) ने निकोटियाना टेबेकम (Nicotiana tabacum) के संकर पौधो ( Hybrid plants ) से प्राप्त ट्यूमर्स से एकल कोसिकाओ को निलम्बन प्राप्त किया जिनका संवर्धन करके सफलता प्राप्त की है। उन्होंने पृथक की गई एकल कोशिकाओं को निलंबन प्राप्त किया जिनका संवर्धन करके सफलता प्राप्त की है। उन्होंने पृथक की गई एकल कोशिकाओं को माइक्रो चैंबर्स में पोषक माध्यम के ऊपर उगाया और उनसे क्लांस प्राप्त किए हैं।

3. विभक्योतक संवर्धन ( Miristem culture ) – मेनिहाट एस्कुलेंटा (manihot askulenta) या कसावा पादप (cassava plant) के उपर दो प्रकार के विषाणु आक्रमण करते है -  अफ्रीकन कसावा मॉजेक विषाणु 
(African carsava mosaic virus) तथा कसावा ब्राऊन स्ट्रीक विषाणु (cassava brown streek virus) जिसके कारण इस पौधे की ऊपज तथा गुणवत्ता नष्ट होने लगती है। इस रोग से बचने के लिए वैज्ञानिकों ने अनेक प्रयास किये है जिसके आधार पर कसावा पादप के अग्रस्थ विभाज्योतक (aerial meristem) का संवर्धन करके रोगराहित बनाया जा सकता है। इन विभाज्योतक के 200- 500 um के सेक्शन काट कर GA3, BAP अथवा NAA से उपचारित करके संवर्धन माध्यम मे रखा जाता है और पौधे प्राप्त किए जाते हैं।

4. ऑर्गन संवर्धन (organ culture) -
(I) भ्रूण संवर्धन (embryo culture) - सर्वप्रथम सन 1904 में प्रसिद्ध वैज्ञानिक हैनिंग (Hanning) ने भ्रूण संवर्धन पर महत्वपूर्ण कार्य किए थे उन्होंने क्रुसीफेरी (cruciferae) के रेफेनस (raphanus) तथा कोकलेरिया (cocheroria) नामक पौधों पौधों के परिपक्व गुणों का कल्चर प्रयोगशाला में करके सफलता प्राप्त की  डायट्रिक (Dietrich,1925) नामक वैज्ञानिक ने खनिज लवण एवं शर्करा युक्त पोशाक मध्यमवर्ग गुणों का संवर्धन कराया और उन्होंने देखा कि इन प्रकार के भ्रूण सामान्य वृद्धि प्रदर्शित करते हैं। लेबेक (laibach ) नामक वैज्ञानिक के अनुसार लाइनर्स (linurs) की जातियों में जब इंटरस्पेसिफिक (interspecific) क्रास कराया जाता है, उनसे प्राप्त बीज हल्के तथा बहुत अधिक झुर्रीदार होते हैं , जिनमें अंकुरण की क्षमता नहीं होती है। उन्होंने इस प्रकार के बीजों से भ्रूणों को पृथक करके सुक्रोज एवं ग्लूकोस युक्त पोषण माध्यम पर संवर्धन किया और सफलता प्राप्त की। उन्होंने स्पष्ट कर दिया कि इस विधि द्वारा इंटरससिफिक क्रॉस से शंकर पौधों को प्राप्त किया जा सकता है ।आधुनिक युग में पादप अभी जनों को द्वारा यह विधि अपनाई जाती है ,इस प्रकार भ्रूणों का संवर्धन से उनके विकास के लिए पोषक तत्वों का भी पता लगाया जा सकता हैै।
(ii) परागकोष संवर्धन (anthor culture) - प्रायः संपूर्ण पराग कोष के संवर्धन द्वारा अगुणित पौधों को प्राप्त किया जा सकता है इसके लिए पुष्प कलिका ओं का चयन करके उन्हें क्लोरीन वॉटर अथवा अल्कोहल से धोकर स्टेरलाइज्ड कर लेते हैं इसके बाद पुष्प पुष्प कलिकाओं को खोल कर चिमटी की सहायता से परागकोशो को चुनकर पेट्रीप्लेट में लिए गए पोशाक माध्यम के ऊपर  रख देते हैं । यह क्रिया इनॉक्यूलेशन कहलाती है जिसे अजर्म परिस्थितियों में किया जाता है ।इसके पश्चात बैटरी प्लेट्स को उपयुक्त तापमान पर कुछ दिनों के लिए रख देते हैं। ऐसा करने से प्रायः एक प्ररागकोष से लगभग 10-100 तक तक पौधे प्राप्त हो जाते हैं। सर्वप्रथम  परागकोष से कैलश का निर्माण होता है जिनसे एंब्रॉयड्स बनते हैं ।और प्रत्येक एंब्रॉयड से एक प्लांट एकलेट विकसित होता है।
(iii) अंडाशयो का संवर्धन (culture of ovaries) - Larue ,1942 नामक प्रसिद्ध वैज्ञानिको ने माध्यम के ऊपर अण्डाशयो को कल्चर कराया और उस समय से यह तकनीक विभिन्न प्रकार की समस्याओं जैसे फली के परिवर्तन आदि के लिए अपनाई जा रही है निश्च (Nitsch,1992) नामक वैज्ञानिक ने कल्चर माध्यम में टमाटर, तंबाकू तथा सेम के अंडाशयो को उगा कर सफलता प्राप्त की है।

5.  प्रोटोप्लास्ट संवर्धन (Protoplast culture)- इटली (italy) के वैज्ञानिकों ने सन 1969 में अनेक महत्वपूर्ण कार्य किए और उन्होंने बताया कि कोशिकाओं की कोशिका भित्ति को प्रथम करके कायिक कोशिकाओं के जीव द्रव्य मैं संयोजन किया जा सकता है। जिसका प्रयोग लैंगिक संकरण के स्थान पर कर सकते हैं जिसमें एक  केंद्रक मैं दो प्रकार के जीनटाइप के के जर्मप्लाज्म को मिलाया जा सकता है । कई कोशिकाओं में संकरण विशेष तकनीकों द्वारा किया जाता है। अतः इस बात को बहुत आवश्यकता है कि पैतृक प्रोटोप्लास्ट (parental protoplast) से किस प्रकार कायिक संकर प्राप्त किया जाए तथा invitro में उनका संवर्धन किन विधियों द्वारा किया जा सके ताकि चयन किए गए कायिक संकर कोशिकाओं में सम्पूर्ण संकर पदपो को प्राप्त किया जा सके।
सन 1969 से ही इस प्रकार के कायिक संकरण की विधियों को अपनाया जा रहा हैं और इसके स्थान पर लैंगिक संकरण में भी सफलता प्राप्त की जा चुकी है।

6. Importance of plant tissue culture-
पादप उत्तक संवर्धन के कुछ प्रमुख महत्व निम्नलिखित हैं - 
(1)  पादप उत्तक संवर्धन द्वारा आवश्यक एवं कठिनता से प्राप्त दुर्लभ पादपों का गुणन आसानी से किया जा सकता है।
(2) भ्रूण संवर्धन द्वारा कुछ पौधों, जैसे जूट तथा चावल के अपरिपक्व भ्रूण जो प्रायः नष्ट  हो जाया करते हैं, उनके भ्रूणों को जीवित रखा  जा सकता है।
(3) प्रारोह संवर्धन विधि द्वारा विषाणु रोगग्रस्त पौधों से स्वस्थ पौधों को प्राप्त किया जा सकता है।
(4) कायिक संकरण विधि द्वारा पादप कोशिकाओं में संयोजन(fusion) कराया जा सकता है।
(5) उत्तक संवर्धन पौधों को सालभर उगाया जा सकता है चाहे मौसम कुछ भी हो।
(6) यह बाजार में नई किस्मों के उत्पादन में तेजी लाने में मदद करता है।
(7) इसके द्वारा नए पौधे विकसित करने के लिए बहुत कम जगह की आवश्यकता होती है।
(8) यह एक बहुत तेज तकनीक है पौधों के ऊतकों की एक छोटी मात्रा में कुछ ही हफ्तों में हजारों पौधों का उत्पादन किया जा सकता है।

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Sometic embryogenesis

Synopsis :-
 1.  Introduction
 2.  Direct and indirect embryogenesis
 3. Applications
 4. Factors affecting
 5. Uses of sometic embryogenesis
 6.  Conclusion
 7. Reference

1. Introduction :-  sometic embryogenesis एक artificial process हैं।  जिसमें 1 पौधे या भ्रूण का एकल देहीक कोशिका ( Single Sometic Cell ) से प्राप्त होती है। Sometic embryos पौधों की कोशिकाओं में बनते हैं। जो सामान्य रूप से भ्रूण के विकास में शामिल नहीं होते हैं। अर्थात साधारण पौधे के उत्तक देहिक भ्रूण ( Sometic embryos ) के चारों और कोई भ्रूणपोष या बीज आवरण नहीं बनता है। सक्षम स्त्रोत उत्तक से प्राप्त कोशिकाओं को कोशिकाओं का एक अविभाजित द्रव्यमान बनाने के लिए सुसंस्कृत किया जाता है। जिसे कैलस कहा जाता है। उत्तक संवर्धन माध्यम में पौधों के विकास नियामको  को यहां बनाने के लिए प्रेरित करने के लिए हेरफेर किया जा सकता है। और उसके बाद मैं कैलस बनाने के लिए भ्रूण को प्रेरित करने के लिए परिवर्तित किया जा सकता है। कैलस या भ्रूण निर्माण को प्रेरित करने के लिए आवश्यक विभिन्न पौधों के विकास नियामको  का अनुपात पौधे के प्रकार के साथ बदलता रहता है। दैहिक भ्रूण मुख्य रूप से इन विट्रो में और प्रयोगशाला उद्देश्यों के लिए ठोस या तरल पोषक माध्यम का उपयोग करके उत्पादित किए जाते हैं। जिसमें पौधे विकास नियामक ( PGR )  होते हैं। उपयोग किए जाने वाले मुख्य PGR Auxin होते हैं। लेकिन इसमें साइटोंकाइनिन हो सकता है। कम मात्रा में अंकुर और जड़े एकध्रुवीय होते हैं। जिसमें उन्हें कई मीडिया प्रकारों का संवर्धन किए बिना एक पूरा पौधा बनाने की अनुमति मिलती है। Sometic embryogenesis शारीरिक और जैव रासायनिक घटनाओं को समझने के लिए एक मॉडल के रूप में कार्य किया है। जो पादप विकास प्रक्रियाओं के साथ-साथ जैव - प्रौद्योगिकी उन्नति के एक घटक के दौरान होती है। दैहिक भ्रूणजनन ( Sometic embryogenesis ) का पहला दस्तावेज स्टीवर्ड एट अल द्वारा किया गया था 1908 में और 1959 में रिनर्ट गाजर सेल सांस्पेसन कच्चर के साथ।

2. Direct and indirect embryogenesis : - दही कुंदन को दो तरह से होने के लिए वर्णित किया गया है। 
 ( 1 ) Direct embryogenesis 
 ( 2) Indirect embryogenesis
(1) Direct embryogenesis:- Direct embryogenesis तब होता है। जब भ्रूण को एक समान क्लोन बनाने वाले उत्खनन उत्तक से सीधे शुरू किया जाता है। दूसरे शब्दों में कैलस के बिना एक्सप्लांट से भ्रूण का निर्माण जिसे प्रत्यक्ष भ्रूणजनन कहा जाता है।
(2) Indirect embryogenesis :- Indirect embryogenesis तब होता है। जब अन्वेषक अविभाजित या आंशिक रूप से विभाजित कोशिकाओं ( अवसर कैलस के रूप में संदर्भित ) का उत्पादन करते है, जिसे तब बनाए रखा जाता है। या पौधे के उत्तर को जैसे पत्ती तनाया जड़ों में विवाहित किया जाता है। स्ट्रॉबेरी में अप्रत्यक्ष दैहिक भ्रूण ( indirect sometic embryo ) के विकास के लिए 2,4 डाईक्लोरोफेनोक्सीएसेटिक कसीड़ (2,4 डी.) 6– बेजाईलमिनोप्यूरिन ( BAP ) और जिब्रेलिक एसिड ( GA ) का उपयोग किया गया है।

3. Factors Influencing :-
1. Plant growth regulators :- इस पद्धति के लिए Auxin एक महत्वपूर्ण PGR है। ऑक्सीजन आमतौर पर कोशिका वृद्धि अतिरिक्त कलियों के निर्माण और जड़ की शुरुआत को बढ़ावा देता है। और विशिष्ट पौधों के अंगों में केलस कोशिकाओं के भेदभाव को रोकता है।
2.Nature of explant , explant genotype and culture conditions :- यहां मुख्य बिंदु यह है, कि दैहिक भ्रूणजनन के लिए कई अन्वेषको का उपयोग किया जा सकता है। हालांकि सभी विकास चरण जिसमें मदर प्लांट से एक एक्सप्लांट प्राप्त होता है, भ्रूणजनन  कैलस की दीक्षा में प्रगति को निर्धारित करता है। वैज्ञानिकों के अनुसार युवा या किशोर अन्वेषको को चुनना हमेशा अच्छा होता है। क्योंकि वे पुराने अनुवेशकों की तुलना में अधिक दैहिक भ्रूण पैदा करते हैं।
 3. Other biochemical factors affecting :- अमीनो एसिड जैसे कुछ जैव रसायन ग्लूटामाइन, प्रोलाइन और ट्रिप्टोफैन दैहिक भ्रूणजनन पर गहरा प्रभाव दिखाते हैं। इन्हें हम दैहिक भ्रूणजनन के वर्धक भी कह सकते हैं। वे Sometic embryos के विकास के दौरान कोशिकीय विकास में विशिष्ट भूमिका निभाते हैं। जिससे बेहतर परिणाम प्राप्त होते हैं। कुछ वैज्ञानिक यह भी सुझाव देते हैं। कि कुछ पौधों की प्रजातियों में दैहिक भ्रूणजनन के लिए नारियल पानी, आलू का अर्क, और इसी तरह के अकार्बनिक अर्क आवश्यक है।
             Sometic embryos मैं कोशिका विभेदन को नियंत्रित करने वाले कारक और तंत्र अपेक्षाकृत अस्पष्ट है। पादप उत्तक संवर्धन द्वारा उत्तर उत्सर्जित और कल्चर मीडिया में पाए जाने वाले कुछ भी योगीको को कोशिका विभाजन और रूपात्मक परिवर्तनों के समन्वय के लिए आवश्यक दिखाया गया है। इन योगीको की पहचान चुग एट अल ने की है। विभिन्न  पॉली सेकेराईड, अमीनो एसिड, विकास नियमक, विटामिन कम आण्विक भार योगिको और पॉलीपेप्टाइड्स के रूप मे कई Signling molecules sometic embryo के  गठन को प्रभावित करने या नियंत्रित करने के लिए जाना जाता है। और इसमें बाह्य प्रोटीन अरबीनोग्लेकटन प्रोटीन और लिपोचीटलिगोसेकेराईड शामिल है। तापमान और प्रकाश व्यवस्था भी दैहिक भ्रूण की परिपक्वता को प्रभावित कर सकती है।

 4. Applications :- इस प्रक्रिया के अनुप्योगों में शामिल है –
                आनुवांशिक रूप से समान संयंत्र सामग्री का क्लोनल प्रसार, वायरस का उन्मूलन, अनुवांशिक परिवर्तन के लिए स्त्रोत उत्तक का प्रावधान एकल कोशिकाओं से संपूर्ण पौधों का निर्माण जिन्हें प्रोटोप्लास्ट् कहते हैं, कृत्रिम बीज प्रौद्योगिकी का विकास आदि अनुप्रयोग शामिल है।

5.Uses of Sometic embryogenesis : - 
(A.) Plant transformation ( समंत्र परिवर्तन )
(B.) Mass propagation ( बड़े पैमाने पर प्रसार )
Forestry related examples ( वानिकी संबंधित उदाहरण ) 
दैहिक भ्रूणजनन प्रक्रियाओं के विकास में व्यावसायिक महत्व के वृक्ष प्रजातियों के लिए लकड़ी के पौधों के बीज भंडारण प्रोटीन (एसएसपी) पर अनुसंधान को जन्म दिया है, अर्थात मुख्य रूप से जिम्नोस्पर्म, सफेद स्पूस शहीत अध्ययन के क्षेत्र में, SSP का उपयोग मार्कर के रूप में किया जाता है। ताकी भ्रूणजनय प्रणाली की क्षमता और क्षमता का निर्धारण किया जा सके ताकि एक दैहीक भ्रूण जैव रासायनिक रूप से उसके जाईगोटीक समकक्ष ( फिलर ऐंट अल 1991 , बियर्डमोर एट अल 1997 ) के समान हो।
               ग्रोसनिकल एट अल ( 1992 ) नर्सरी के विकास के दौरान और खेत में रोपण से ठीक पहले स्टॉक गुणवत्ता मूल्यांकन कार्यक्रम के माध्यम से आंतरिक स्पूस पौधे की तुलना एंबलिंग से कि, पहले बढ़ते मौसम की पहली छमाही के दौरान अंकुर की ऊंचाई, जड़ कॉलर, व्यास और सूखे वजन में अंकुरो की तुलना में अधिक दर से वृद्धि हुई, लेकिन उसके बाद सभी पौधों के बीच शूट की वृद्धि समान थी। बढ़ते मौसम के अंत तक, अंकुरो की तुलना में अंकुर 70% लंबे थे, जब कॉलर का व्यास अधिक था। और अधिक सुखा बजन था। शुरुआती बढ़ते मौसम के दौरान अंकुरों की तुलना में अंकूरों में जड़ का सूखा बजन अधिक तेजी से बढ़ता है।
           गिरावट के अनुकूलन के दौरान, निष्क्रियता रिलीज सूचकांक में वृद्धि और ठंड के प्रति बढ़ती सहनशीलता का पैटर्न रोपण और एंबलिंग दोनों में समान था। जड़ वृद्धि क्षमता में कमी आई है, फिर गिरावट के दौरान वृद्धि हुई है, जिसमें वृद्धि रोपण में अधिक होने के साथ हुई है।
         रोपण से ठीक पहले स्टॉक की गुणवत्ता के आकलन से पता चला है, कि एंबलिंगस में पानी के उपयोग की दक्षता अधिक थी और अंकुरो की तुलना में प्रीडॉन शूट वॉटर क्षमता कम हो गई थी, उच्च और निम्न जड़ तापमान दोनों पर रोपण और एंबलिंग में समान जल संचलन क्षमता थी, कम जड़ तापमान पर शुद्ध प्रकाश संश्लेषण और सुई चालक अंकुरो की तुलना में अधिक थे। 
             और 12°c जड़ पर अंकुर की तुलना में अंकुरो की जड़ वृद्धि अधिक थी लेकिन सभी पौधों में जल की वृद्धि 7.5°c जड़ तापमान पर कम थी।
            बढ़ते मौसम के दौरान अंकुरो और एंबलिंग में शूट की वृद्धि की दर भी एक दूसरे के समान थी, रोपण के समय और बढ़ते मौसम के अंत में सीडलिंग में बड़े शूट सिस्टम थे। बढ़ते मौसम के दौरान अंकूरों की जड़ों का विकास भी एमबलिंग की तुलना में अधिक होता है, लेकिन 2 स्टॉक प्रकारों के लिए Root Shoot अनुपात बढ़ते मौसम के अंत में समान थे, जब रोपाई और एंब्लिंग्स के लिए जीवित रहने की दर क्रमश: 96% और 99% थी।
 
Anziosperm:- एंजियोस्पर्म में भ्रूण के विकास को कई चरणों में बांटा गया है। युगमनज असमनीत रूप से विभाजित होकर एक छोटी शीर्ष  कोशिका ओर बड़ा बेसल कोशिका बनाता है। संगठनात्मक पैटर्न में गोलाकार अवस्था में बनता है। और भ्रूण की फिर बीजपत्र अवस्था में संक्रमण करता है। एकबीजपत्री और द्विबीजपत्री में भ्रूण का विकास अलग - अलग होता है। डायकोड गोलाकार, दिल के आकार के और टारपीडो चरणों में गुजरते हैं, जबकि मोनोकोट गोलाकार, स्कूटेलर और कोलेप्टिलर चरणों से गुजरते हैं।
             विकास पथ और आणविक तंत्र के संबंध में गाजर डकस  कैरोटा पहली और सबसे अधिक समझी जाने वाली प्रजाति थी।

Gymnosperm  :- जिम्नोस्पर्म में भ्रूण विकास का तीन चरणों में होता है। Proembryogenesy में सस्पेंसर बढ़ाव से पहले के सभी चरण शामिल है। प्रारंभिक भ्रूणजनन में सस्पेंसर बढ़ाव के बाद लेकिन रूट मेरिस्टेम विकास में पहले के सभी चरण शामिल है। नार्वे में टाइम लेप्स ट्रैकिंग से पता चला कि न तो एकल साइटोप्लास्मिक समृद्धि कोशिकाएं और न ही रिक्त कोशिकाएं भ्रूण में विकसित हुई। प्रायोएमब्रोजनिक मास ( PEM ) असंगठित कोशिकाओं के बीच एक मध्यवर्ती और एक रिक्त कोशिका के बगल में साइटोप्लास्मिक समृद्धि को धीरे - धीरे हटाने और एब्सिमिक एसिड का परिचय एक भ्रूण को बनाने की अनुमति देगा।
          वानस्पति रूप से प्रचारित शंकुधारी क्लोनो के बड़े पैमाने पर उत्पादन और जर्मप्लाजम के क्रायोप्रिजर्वेशन के लिए दैहिक भ्रूणजनन का उपयोग करने पर विचार किया गया है। हालांकि कोनिफर्स के वृक्षारोपण और वृक्ष प्रजनन के लिए इस तकनीक का उपयोग अपनी प्रारंभिक अवस्था में है।

6. Conclusion : -  
(1) Indirect Sometic  embryogenesis प्रजनन चक्र को कम करता है।
(2)  फसल सुधार में Indirect Sometic embryogenesis का उपयोग किया जाता हैं। 
(3)  Indirect Sometic embryogenesis वायरस मुक्त पौधों का उत्पादन कर रहे है।
(4) Indirect Sometic embryogenesis Direct embryogenesis से बेहतर है।

7. References : - 
                   Book name---Scientist name
  • Sometic---Victor m.loyal
  • embryogenesis---Vargas
  • Fundamental aspects---Neftali Ochoa
  • and applications--- Alejo